耐药性的加剧，无抗养殖的实施，噬菌体作为细菌的“天敌”发挥着不可替代的作用。噬菌体（bacteriophage，phage）是能够侵染细菌的病毒，但对非靶向的细菌是无毒的，针对目标菌株，可以渗透或者破坏生物膜[1]。生物圈中普遍存在着噬菌体，既可以特异性的靶向裂解细菌，也可以通过基因突变的技术拓展噬菌体的宿主谱。噬菌体分为毒性噬菌体和温和型噬菌体。能与对应的宿主细胞在短时间内完成吸附、侵入、合成、成熟和释放复制周期的噬菌体，称为烈性噬菌体；温和噬菌体能感染宿主菌，但并不能增殖，不引起细胞的裂解，但其基因整合于细菌染色体从而复制给子代[2]。大量研究表明，肠道内的噬菌体与细菌存在微生物菌群动态平衡的关系，毒性噬菌体能够保护宿主抵抗外来病原菌的入侵，维持肠道健康[3-6]。噬菌体可以侵染细菌，治疗很多细菌性疾病。研究表明，噬菌体可以治疗是由产肠毒素大肠杆菌感染引起的仔猪腹泻，并且取得了显著的疗效[7-8]。Tanji等[9]用3株广谱噬菌体做成混合制剂，成功裂解了E.coli O157∶H7菌；同样混合制剂治疗被E.coli O157∶H7感染的小鼠，小鼠肠道的感染菌完全裂解。此外，使用噬菌体和生理盐水分组治疗经大肠杆菌感染的小鼠，结果显示，噬菌体治疗组全部存活，而生理盐水组全部死亡[10]。本实验室前期从养鸡场采集粪便，分离的大肠杆菌噬菌体已对噬菌谱进行研究，发现对大肠杆菌血清型O1和O2有裂解能力。为进一步验证噬菌体治疗禽大肠杆菌发挥的作用，本试验选取分离的噬菌体对其生物特性和临床治疗进行研究，为噬菌体临床治疗禽大肠杆菌病提供参考。1材料与方法1.1试验材料1.1.1宿主菌和噬菌体实验室使用的大肠杆菌血清型O1购自中国兽医微生物菌种保藏管理中心（保藏号：CVCC1343）；所用噬菌体为鸡场粪便分离纯化的噬菌体。1.1.2培养基LB液体培养基（1 L）：Tryptone 10 g、Yeast E tract 5 g、NaCl 10 g。LB半固体和LB固体（1 L）培养基在LB液体培养基基础上再分别加Agar 7.5 g和15 g、生理盐水、HCl试液、1 mol/L NaOH溶液和过氧乙酸等。1.1.3仪器设备YXQ-75S11自动蒸汽灭菌锅（上海博迅实业有限公司医疗设备厂）、SW-CJ-1F超净操作台（苏州安泰空气技术有限公司）、GHP-9160恒温培养箱（上海一恒科学仪器有限公司）、HZQ-X300C恒温摇床（上海一恒科学仪器有限公司）、H1750R离心机（长沙高新技术产业开发区湘仪离心机仪器有限公司）、微量移液器、培养皿、一次性0.45 μm和0.22 μm微孔针式过滤器、灌胃针、鸡笼等。1.1.4试验动物与日粮1日龄白羽肉鸡购自山东泰安孵化场；日粮购自新希望六和禹城分公司。1.2试验方法1.2.1生物学特征利用双层琼脂平板法研究噬菌体的pH值、热稳定性、生长曲线和最佳感染复数的生物学特征。下层板：灭菌的LB固体培养基冷却至55 ℃，使用10 mL注射器吸取10 mL LB至平板中冷却凝固。上层板：100 μL稀释的噬菌体、500 μL宿主菌于试管（二者37 ℃水浴5 min混合后）中再加入45 °C的5 mL LB半固体培养基，三者混合后，到入铺有培养基的平板内，凝固，倒置放37 ℃恒温培养箱中培养18~24 h。噬菌体pH值稳定性：取灭菌后的20 mL LB液体培养基9瓶，用HCl试液和1 mol/L NaOH溶调pH值分别为3、4、5、6、7、8、9、10、11。从每瓶中分别取0.9 mL至无菌的EP管中，放入37 °C恒温水浴锅中8 min，在加入0.1 mL噬菌体（109 PFU/mL），再放37°C水浴锅恒温作用45 min。再从各EP管中取0.1 mL做10倍梯度稀释，用双层板法测定噬菌体效价。噬菌体热稳定性：各取噬菌体原液1 mL分装于无菌EP管中，分别置于15、25、30、40、50、60 ℃恒温水浴锅中，保温静置90 min，分别在30、60、90 min时间点取0.1 mL，液体冷却至室温后，做10倍梯度稀释，用双层板法检测噬菌体效价。噬菌体感染复数：分别取宿主菌O1培养至OD值为0.6菌悬液0.5 mL，再取稀释不同倍数的噬菌体裂解液各0.5 mL，使其感染复数（MOI）分别为0.001、0.01、0.1、1、10和100，混合均匀，从各混合液中取0.5 mL加入50 mL LB培养液中，37℃、150 r/min振荡培养6 h，4 °C、8 000 r/min离心20 min，经0.22 μm微孔滤膜过滤，得到噬菌体裂解液利用双层板法测其效价。噬菌体一步生长曲线：指定量记载噬菌体生长规律所绘制的曲线，从曲线中清晰地看出噬菌体的潜伏期、裂解期和平稳期。加入MOI为0.1的噬菌体液和O1宿主菌至LB液体培养基中，37 ℃恒温水浴15 min，10 000 r/min离心5 min，取沉淀使用37℃ LB液体培养基洗涤2次，取离心的沉淀加入37 ℃ LB液体培养基10 mL，混匀，37 ℃恒温摇床150 r/min培养，从0 min开始每隔15 min采集液体测效价，直到135 min。以感染时间为横坐标，效价为纵坐标绘制噬菌体的一步生长曲线。1.2.2攻毒预试验攻毒菌液的制备：取25%甘油保存的大肠杆菌血清型O1 0.5 mL加入灭菌后的50 mL LB液体培养基中，37 ℃恒温摇床150 r/min培养12 h。采用平板计数法测定菌液的浓度。根据菌液的浓度，使用生理盐水将菌悬液稀释为4个梯度，分别为5.0×107、1.0×108、3.0×108、5.0×108 PFU/mL。攻毒方式：参考文献[11]选择腹腔注射的方式进行攻毒。选取50只健康、7日龄817肉鸡，平均分为Gl、G2、G3、G4和对照组，每组8只。每只肉鸡分别注射0.3 mL/只制备好的菌液，对照组注射0.3 mL生理盐水。攻毒前，禁食、禁水12 h。攻读期间，正常饲喂，周期为7 d。7 d后统计鸡的状态[12]（疾病评分标准：0=正常，1=蹲卧、精神不振、采食下降等，2=死亡）。1.2.3噬菌体的治疗试验噬菌体的安全性检测：取制备好的噬菌体裂解液0.1 mL用涂布棒均匀涂在LB固体培养基上，37 °C倒置培养18~24 h，检测有无细菌生长。噬菌体的毒性检测：选取20只雏鸡，分成A和B两组，每组10只，A组每只雏鸡口服1 mL噬菌体（l×1010 PFU/mL），B组为空白对照。观察雏鸡是否发病，试验持续至雏鸡10日龄。噬菌体的防治作用：选取160只7日龄雏鸡随机分为8组，每组20只。攻毒之前，禁食、禁水12 h。试验期间正常饲喂和饮水，定时通风换气、更换垫料。攻毒腹腔注射0.3 mL菌液（菌浓度为2×l08 PFU/mL），给药采用攻毒后立即饮水灌喂法0.5 mL和注射法0.2 mL，7 d后记录每组雏鸡发病、治死亡情况及得分。试验设计见表1。XX.XXXX/j.issn.1672-9692.2021.09.012.T001表1试验设计Tab.1Experimental design组别雏鸡数量/只攻毒给药途径处理A20-B20+灌胃3 d攻菌前3 d，灌喂噬菌体1010 PFU/mLC20+灌胃3 d攻菌后，灌喂噬菌体109 PFU/mLD20+灌胃3 d攻菌后，灌喂噬菌体1010 PFU/mLE20+灌胃3 d攻菌后，灌喂噬菌体1011 PFU/mLF20+注射3 d攻菌后，注射0.2 mL噬菌体1010 PFU/mLG20+饮水3 d攻菌后，饮水阿莫西林H20+注 ：+表示攻毒；-表示未攻毒。2结果与分析2.1噬菌体生物活性2.1.1噬菌体pH值稳定性结果（见图1）由图1可知，噬菌体在pH值4~9时，均保持较高的活性，效价结果变动不大。XX.XXXX/j.issn.1672-9692.2021.09.012.F001图1噬菌体pH值稳定性结果Fig.1Results of pH stability of phage2.1.2噬菌体热稳定性结果（见表2）由表2可知，噬菌体在37 ℃以下生物活性基本保持不变。但在50 ℃作用60 min后，原有的活性下降明显，特别是在60 ℃作用90 min后，只能看到个别噬菌斑，说明噬菌体不易在高温下储存。XX.XXXX/j.issn.1672-9692.2021.09.012.T002表2噬菌体热稳定性结果Tab.2Stability of phage under different temperature温度/°C初始效价30 min效价60 min效价90 min效价4l011l011l011l01115l011l011l011l01125l011l011l011l01137l011l011l011l01050l011l010l09l0860l011l09l08l07PFU/mL2.1.3噬菌体感染复数结果（见图2）由图2可知，通过双层板琼脂平板法测定大肠杆菌噬菌体的MOI是1，测得滴度是3.0×1011 PFU/mL。XX.XXXX/j.issn.1672-9692.2021.09.012.F002图2噬菌体感染复数结果Fig.2Results of phage multiplicity of infection2.1.4噬菌体一步生长曲线结果（见图3）由图3可知，在0~15 min内噬菌体数量无增长，在15~75 min内噬菌体的滴度达到2.7×1011 PFU/mL处于裂解期，在75~150 min噬菌体的数量几乎未发生改变。由此可知，噬菌体的潜伏期很短，为0~15 min，裂解期很长，为15~75 min。根据这一生物特性能更好地被临床实践所利用。XX.XXXX/j.issn.1672-9692.2021.09.012.F003图3噬菌体一步生长曲线Fig 3One-step growth curve phage2.2攻毒预试验结果（见表3）由表3可知，7 d后G3组死亡率50%，统计分数9分，G4组死亡率高，且其他鸡精神不振，统计得分11分，综合判断选G3组为攻毒的剂量。XX.XXXX/j.issn.1672-9692.2021.09.012.T003表3预试验结果Tab.3Pretest result组别菌浓度/(PFU/mL)雏鸡数量/只7 d死亡数/只死亡率/％得分G15.0×1078002G21.0×1088112.54G33.0×1088450.09G45.0×1088562.511G50.3 mL NaCl100002.3大肠杆菌噬菌体的防治结果2.3.1噬菌体的安全性结果噬菌体安全性检测是用噬菌体裂解液涂在LB平板上，培养3 d无菌落，平板呈透明状。2.3.2噬菌体的毒性试验结果口服噬菌体1 mL的雏鸡1 w内未出现患大肠杆菌病的任何不适症状，且雏鸡存活率是100%。因此，噬菌体裂解液安全可靠，可以用于大肠杆菌病防治试验。2.3.3噬菌体的防治试验结果（见表4）由表4可知，预防组口服噬菌体对鸡感染大肠杆菌病预防效果不明显。原因可能是噬菌体的特异性决定的，提前进入机体的噬菌体在体内无特定的目标菌株可以裂解，不能大量增殖而凋亡，达不到防控的效果[11-12]。口服组对鸡感染大肠杆菌的有一定的治疗效果。口服组随着滴度增加，治疗效果越好，C组、D组和E组的治疗率分别为60%、75%和80%。原因可能是大肠杆菌在鸡体内存留，噬菌体侵入后可以快速繁殖，进而将宿主菌裂解，保护机体免受大肠杆菌的进一步侵害。注射组噬菌体优于口服组治疗，同滴度噬菌体注射组和口服组的治疗率分别是85%和75%。原因可能是攻毒和治疗都采用注射方式，机体吸收的快，二者繁殖过程中相互作用，一定程度上阻止了鸡大肠杆菌病的发生。抗生素组的治疗效果不如口服组和注射组，原因可能是攻毒的大肠杆菌本身携带的耐药性有关。XX.XXXX/j.issn.1672-9692.2021.09.012.T004表4噬菌体防治试验结果Table 4Test results of phage prevention and treatment组别接种鸡数量/只存活鸡数量/只存活率/%得分A对照组（阴性）20201000B预防组（1010 PFU/mL）20115521C口服组（109 PFU/mL）20126018D口服组（1010 PFU/mL）20157511E口服组（1011 PFU/mL）20168010F注射组（1010 PFU/mL）2017857G抗生素组20147014F对照组（阳性）201050243讨论目前，噬菌体的开发和应用得到业界的肯定，并且在治疗方面取得显著的疗效。本试验首先对噬菌体的生物特性进行研究，生物学特性试验是对噬菌体进行应用性研究的基础，通过对其温度稳定性、pH值稳定性、最佳感染复数以及一步生长曲线的测定，掌握生长特性，在后期的噬菌体治疗鸡感染大肠杆菌病的临床试验中起关键性作用。在噬菌体的防治试验中，通过预防、口服和注射3种途径对鸡大肠杆菌病进行防治试验，发现噬菌体预防对鸡大肠杆菌病所起的效果不大，口服和注射治疗鸡感染大肠杆菌病有很好的治疗效果，明显降低了死亡率，并且注射治疗优于口服治疗。另外，在口服治疗试验中，设置不同的滴度进行治疗，发现随着滴度的升高，降低死亡率的效果越显著，临床试验结论与其他研究人员得出的结论相符[13-14]。临床试验结果显示，大肠杆菌噬菌体的防治效果与给药时间、给药方式和给药剂量有关。虽然噬菌体的治疗效果显著，但是具体治疗机制还需继续研究，而且噬菌体作为一种病毒和生物性治疗剂，可能导致某些毒性基因与耐药基因的扩散等问题[15]。4结论大肠杆菌噬菌体对禽病大肠杆菌预防作用不大，口服和注射对禽病大肠杆菌治疗效果显著，并且注射治疗效果优于口服效果，口服高剂量组比低剂量组治疗效果好。