酵母制剂是由酿酒酵母菌发酵生成的饲料添加剂，根据活的酵母细胞数量分为活性干酵母（ADY）和酵母培养物（YC），优质的活性干酵母的活菌数可以达到109 CFU/g[1]。活性干酵母是活菌制剂，添加到反刍动物日粮中可以稳定其瘤胃内环境，保持pH值稳定，降低毒素含量，降低瘤胃酸中毒的风险，改善生产性能[2-3]。研究发现，活性干酵母可以调节反刍幼龄动物肠道菌群结构，增加纤维杆菌属、罗斯氏菌属的含量，降低有害致病菌的数量，促进动物快速生长[4]。王泳杰等[5]研究表明，活性干酵母可以增强牦牛机体血清的免疫力，提高抗氧化功能。王磊等[6]发现，日粮中添加活性干酵母可以提高肉牛生长性能，改善营养物质表观消化率、瘤胃发酵参数和血清生化指标。活性干酵母可以提高肉牛的屠宰性能，提高机体内脂肪的利用率，提高不饱和脂肪酸和单不饱和脂肪酸的含量，进而改善肌肉的嫩度[7]。目前，活性干酵母的研究主要集中在反刍动物的生长性能方面，少量研究肉牛的肉品质，对于在肉羊屠宰性能、抗氧化性、肉品质方面的研究甚少。因此，本研究以肉羊为研究对象，探讨活性干酵母对其生长性能、屠宰性能、抗氧化性及肉品质的影响，确定其在肉羊日粮中的最适添加量，为活性干酵母在肉羊养殖生产中的应用提供参考。1材料与方法1.1试验材料反刍动物专用活性干酵母由青海省威思顿生物工程有限公司提供，活菌数大于2×1010 CFU/g，水分≤5.5%。1.2试验设计试验选取体重相近、健康的肉羊（湖羊）80只，随机分为4组，每组4个重复，每个重复5只肉羊。各组试验肉羊分别饲喂含有0、1、2、4 g/d活性干酵母的基础日粮，试验期90 d。基础日粮组成及营养水平见表1。10.13557/j.cnki.issn1002-2813.2021.15.006.T001表1基础日粮组成及营养水平原料组成含量/%营养水平合计100.00玉米38.15代谢能/(MJ/kg)12.30豆粕19.50粗蛋白/%13.86麸皮8.00中性洗涤纤维/%41.32玉米秸秆32.00酸性洗涤纤维/%22.10磷酸氢钙0.85钙/%0.97食盐0.45磷/%0.44石粉0.95预混料0.10注：预混料由宁夏大北农科技实业有限公司提供。1.3饲养管理试验开始前，对圈舍进行清洗、消毒、通风1 w。肉羊试验前统一进行免疫和驱虫，驱虫使用伊维菌素。每天保证羊舍的环境卫生。试验期间肉羊自由采食和饮水，其他管理程序按照养殖场的日常管理进行。1.4测定指标及方法1.4.1生长性能试验第1 d和最后1 d，试验肉羊禁食12 h，饮水正常，分别称量其空腹体重，并记录每日每组的总采食量，用于计算肉羊的平均日增重、平均日采食量及料重比。平均日增重=(末重-初重)/试验天数(1)平均日采食量=总采食量/(试验天数×肉羊数量)(2)料重比=平均日采食量/平均日增重(3)1.4.2屠宰性能试验最后1 d，每个重复选取2只体重相近的肉羊进行屠宰，屠宰前准确称取宰前体质量，屠宰放血干净后去掉头、蹄、内脏、皮毛，再称量胴体重；胴体脂肪含量（GR值）参考文献[8]的方法进行测定。计算屠宰率和眼肌面积。屠宰率=胴体重/宰前活重×100%(4)眼肌面积(cm2)=眼肌宽×眼肌高×0.7(5)1.4.3肉品质取其屠宰肉羊的右边背最长肌用于测定pH值、滴水损失、剪切力、熟肉率、肌肉粗蛋白、粗脂肪、水分、灰分等肉品质指标，具体步骤参考沙玉柱等[9]的方法进行。1.4.4抗氧化指标试验最后1 d，屠宰肉羊之前，颈静脉采血10 mL，分离血清用于检测血清抗氧化指标。丙二醛（MDA）含量、总抗氧化能力（T-AOC）、超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化氢酶（CAT）、谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）活性根据试剂盒说明书进行检测。试剂盒购自南京建成生物工程研究所。1.5数据统计与分析数据采用Excel进行简单的统计处理，采用SPSS 22.0统计软件进行单因素方差分析，使用Duncan氏法进行组间数据的多重比较，结果以平均值和总标准误表示，P0.05表示差异显著。2结果与分析2.1不同剂量的活性干酵母对肉羊生长性能的影响（见表2）由表2可知，2 g/d ADY组肉羊的平均日增重显著高于其他各组（P0.05）；2 g/d ADY组肉羊的料重比显著低于对照组和1 g/d ADY组（P0.05）；4 g/d ADY组肉羊料重比有比对照组降低的趋势，但未达到显著水平（P0.05）。10.13557/j.cnki.issn1002-2813.2021.15.006.T002表2不同剂量的活性干酵母对肉羊生长性能的影响项目初重/kg末重/kg平均日增重/(kg/d)平均日采食量/(kg/d)料重比对照组34.5854.230.22b1.406.36a1 g/d ADY组34.9055.720.23b1.416.13a2 g/d ADY组34.8557.930.26a1.425.46b4 g/d ADY组34.9756.200.24b1.415.88abSEM2.042.730.030.080.16P值0.8860.0730.0200.4830.028注：同列数据肩标不同字母表示差异显著（P0.05），相同字母或无字母表示差异不显著（P0.05）；下表同。2.2不同剂量的活性干酵母对肉羊屠宰性能的影响（见表3）由表3可知，2 g/d ADY组肉羊的胴体重、屠宰率眼肌面积显著高于对照组（P0.05），其余剂量组有比对照组提高的趋势，但差异不显著（P0.05）。10.13557/j.cnki.issn1002-2813.2021.15.006.T003表3不同剂量的活性干酵母对肉羊屠宰性能的影响项目宰前活重/kg胴体重/kg屠宰率/%眼肌面积/cm2GR值对照组54.1622.88b42.25b18.41b9.651 g/d ADY组55.5823.96ab43.12ab19.76ab9.562 g/d ADY组57.6025.65a44.53a20.31a9.404 g/d ADY组55.9724.30ab43.42ab19.80ab9.54SEM0.300.170.260.210.14P值0.4700.0360.0480.0210.1642.3不同剂量的活性干酵母对肉羊肉品质的影响（见表4）由表4可知，2 g/d ADY组羊肉的pH24 h值显著高于对照组（P0.05）；2 g/d ADY组和4 g/d ADY组羊肉的滴水损失显著低于对照组和1g/d ADY组（P0.05）；2 g/d ADY组和4 g/d ADY组肉羊的剪切力和蒸煮损失显著低于对照组（P0.05）。各组之间其余各指标差异均不显著（P0.05）。10.13557/j.cnki.issn1002-2813.2021.15.006.T004表4不同剂量的活性干酵母对肉羊肉品质的影响项目pH45 min值pH24 h值滴水损失/%剪切力/kg·f蒸煮损失/%粗蛋白/%粗脂肪/%水分/%灰分/%对照组6.305.53b3.69a6.23a38.56a17.482.5372.642.061 g/d ADY组6.315.60ab3.43a5.78ab37.80ab17.802.5072.601.982 g/d ADY组6.335.71a2.74b5.03b36.27b18.312.4872.431.954 g/d ADY组6.355.64ab2.80b5.20b36.88b18.062.4772.371.96SEM0.170.350.140.452.501.270.163.070.08P值0.3610.0180.0210.0410.0420.5390.6210.8940.5282.4不同剂量的活性干酵母对肉羊血清抗氧化指标的影响（见表5）由表5可知，2 g/d ADY组和4 g/d ADY组肉羊的血清SOD活性显著高于对照组（P0.05）；所有活性干酵母组肉羊的血清GSH-Px活性均显著高于对照组（P0.05）；2 g/d ADY组和4 g/d ADY组肉羊的血清MDA含量显著低于对照组（P0.05）。10.13557/j.cnki.issn1002-2813.2021.15.006.T005表5不同剂量的活性干酵母对肉羊血清抗氧化指标的影响项目T-AOC/(mmol/L)SOD/(U/mL)CAT/(U/mL)GSH-Px/(U/mL)MDA/(μmol/L)对照组0.8255.75b5.5790.63c4.75a1 g/d ADY组0.8563.89ab5.60104.56b4.08ab2 g/d ADY组0.8869.06a5.63118.50a3.23b4 g/d ADY组0.8668.83a5.58106.09b3.54bSEM0.073.470.264.410.40P值0.1820.0150.1080.0310.0113讨论3.1不同剂量的活性干酵母对肉羊生长性能的影响本试验中，2 g/d ADY组肉羊的平均日增重显著高于其他各组；2 g/d ADY组肉羊的料重比显著低于对照组和1 g/d ADY组，说明在肉羊日粮中添加适量活性干酵母可以有效改善其生长性能。李宁等[10]研究发现，每日饲喂2 g活性干酵母可以显著提高犊牛生长性能。在4日龄以后的犊牛日粮中每日添加2.5 g/d酿酒酵母，84 d后，犊牛的平均日增重比对照组显著提高34%，采食量显著提高75 g/d[11]。上述研究结果与本试验研究结果相似，但本试验中肉羊的采食量未显著提高，可能是因为试验动物品种不同。活性干酵母提高动物生长性能的可能原因是其为动物提供健康的胃肠道环境，进而提高动物对营养物质的消化吸收，最终改善生长性能[12]。3.2不同剂量的活性干酵母对肉羊屠宰性能的影响动物的日常饲养管理水平、屠宰加工环节可以直接影响畜禽的屠宰性能，最终影响到养殖的经济效益[13]。屠宰性能中的屠宰率、GR值、眼肌面积等是评价胴体的主要指标。正常情况下，肉羊的眼肌面积越大，其胴体重越高，直接影响肉羊的产肉率的高低，进而影响养殖者的经济效益；GR值可以反映肉质的脂肪含量，GR值越低，说明脂肪含量越少，瘦肉率越高[14-15]。本试验结果表明，添加2 g/d ADY组肉羊的胴体重、屠宰率眼肌面积显著高于对照组，其余剂量组有比对照组提高的趋势，但差异不显著。黄文明等[16]研究发现，添加150 g/d的活性干酵母可以有效提高肉牛的背膘厚度。秦培鹏等[17]研究发现，活性干酵母对肉牛的净肉重有显著影响，但对屠宰率未产生显著影响。上述研究结果与本市研究不完全相同，可能与试验动物种类、活性干酵母浓度及饲养时间不同有关。3.3不同剂量的活性干酵母对肉羊肉品质的影响本试验中，2 g/d ADY组肉羊的pH24 h值显著高于对照组；2 g/d ADY组和4 g/d ADY组肉羊的滴水损失显著低于对照组和1 g/d ADY组；2 g/d ADY组和4 g/d ADY组肉羊的剪切力和蒸煮损失显著低于对照组，说明活性干酵母可以提高肉质的保水力，改善肉的嫩度。耿春银等[7]研究表明，活性干酵母可以显著改善肉牛的剪切力，提高机体对脂肪的利用率，有增加单个脂肪酸和总脂肪酸含量的趋势，但对肌肉的pH值、滴水损失、蒸煮损失及肉色均无显著的影响。本试验结果与上述研究结果相似。目前，活性干酵母对肉羊肉品质的影响研究较少，其改善肉品质的具体机理还需进一步研究。3.4不同剂量的活性干酵母对肉羊血清抗氧化的影响动物机体内产生的自由基和清楚的自由基处于动态平衡，当机体受到应激后，会引发机体产生氧化应激。氧化应激产生的自由基会导致生物膜上的多不饱和脂肪酸氧化生成对机体有害的丙二醛。因此，丙二醛的含量可以预测机体脂质氧化程度、自由基代谢状况及细胞损伤[18]。同时，动物机体也存在抗氧化酶系统来维持机体的稳态，使机体处于氧化还原平衡[19]。本试验中，2 g/d ADY组和4 g/d ADY组肉羊的血清SOD活性显著高于对照组；所有活性干酵母组肉羊的血清GSH-Px活性均显著高于对照组；2 g/d ADY组和4 g/d ADY组肉羊的血清MDA含量显著低于对照组，说明活性干酵母可以很好地改善肉羊机体的抗氧化能力，使机体处于健康的状态。李宁等[10]研究显示，活性干酵母可以显著提高犊牛的血清SOD活性，提高犊牛的抗氧化功能。活性干酵母可以显著提高断奶仔猪SOD活性，显著降低MDA含量[20-21]。在育肥羊日粮中添加酿酒酵母可以显著提高其血清中GSH-Px活性[22]。活性干酵母提高动物抗氧化功能的原因可能是其改善动物的肠道健康，进而提高机体的抗病力，从而增强机体的抗氧化功能。4结论在肉羊日粮中添加活性干酵母可以显著改善肉羊的生长性能、屠宰性能和肉品质，增强抗氧化功能，且最适添加量为2 g/d。